该固定化酵母载体是以南开大学校本部为依托，南开大学云南研究院研发出的高科技专利产品。采用原生质体融合、诱变育种等现代微生物技术选育出优良酵母菌种，将其固定在新型有机－无机复合载体上，采用两罐连续流动发酵法即可满足高效率(10小时以内完成)发酵的要求，具有耐高酒份（10～13%），低残糖（1.2～1.8%）、耐高渗（40°Bx）、耐高温（35-37℃）、耐高酸(pH2.5-5.0)的优点。适用于酒精生产，使用寿命一年以上，也适用于废糖蜜发酵、无酸发酵等环保酒精生产工艺，并可广泛用于发酵工业、环保、医

产品详细介绍

简单介绍： 适用于4kg以下的兔子，用于生理药理做动物整体实验时限制兔子的活动，适合头部实验，灌胃，兔子大小可以调节尾部。可冲洗，酒精**。 详情介绍： 产品名称：兔固定箱/兔固定器 型    号：ZL-TGX 材    质;PVC板 规    格：480＊160＊160mm  用    途：适用于4kg以下的兔子，用于生理药理做动物整体实验时限制兔子的活动，适合头部实验，灌胃，兔子大小可以调节尾部。可冲洗，酒精**。  

产品详细介绍技术参数：1、电源电压：交流220V±5%；2、功率：180W；3、符合Q/JD07-2008标准；4、材料：GB32080-92不锈钢；5、定时：可设置8个时间段；6、集气口风速0.3～5m/s；7、载玻片规格：长：76.2mm；宽：25.4mm；厚：1-1.2mm；8、绝缘电阻：≥2.5MΩ。

结合微相机阵列的大视场高分辨率成像系统针对传统成像方法大视场与高分辨相互制约的矛盾，通过微相机阵列与后期的计算成像技术，利用光学系统设计、机械结构设计、电路设计和图像处理技术，快速有效地获得大视场、高分辨率的目标图像。系统原理图及样机如下图所示：在军用方面，如空间目标大范围搜索与监测、空间站安全防护、侦察作战、无人机监控、

本发明公开了一种高温粒子辐照样品的固定装置及其固定方法，包括通过支架固定在辐照设备中的样品夹具，所述样品夹具为竖直的平板结构，板面上设有以面板中心呈中心对称的多个弧形镂空导轨，所述弧形镂空导轨的弧度背离板面中心弯曲；每个所述弧形镂空导轨供螺丝穿过且螺丝具有相适配的螺帽旋紧将配套的垫片锁死，所述垫片将一铜片压在样品夹具的板面上，所述铜片压住样品的边缘，各个弧形镂空导轨对应的铜片相互配合将样品固定在样品夹具上。本发明固定装置采用螺丝、铜片组合的固定方法，可有效避免高温时导电胶粘度降低的问题，不受样品表面光洁度的影响，抵消样品自身所受重力的影响，克服了高温时导电胶粘结度降低的不利因素，提高了试验效率，节约了研究成本，更为牢固、高效、环保。

哺乳动物基因组的广泛转录产生了大量的非编码RNA，相比于细胞质定位的蛋白编码mRNA，这些非编码RNA如长链非编码RNA（lncRNA）、启动子和增强子关联的不稳定转录本（uaRNA、eRNA）等更倾向于结合染色质参与调控染色质结构、转录和RNA加工等过程。尽管零星报导少数RNA核滞留的现象，但为何大部分lncRNA会滞留于染色质上行使调控功能，仍是个不解之谜。上世纪80年代初，Joan Steitz通过系统性红斑狼疮患者血液抗体分离提取 U1,U2, U4, U5和U6小核糖核蛋白粒子（又称为 snRNP），揭示了它们参与RNA剪接的经典功能。近年来施一公团队系统报导了真核生物剪切体的原子结构和生化功能。然而，一直让人困惑的是，细胞内U1 snRNP的数量为什么比其它剪接相关snRNP高 2-5倍。虽然Gideon Dreyfuss和Phil Sharp等团队曾揭示U1 snRNP调控转录终止和方向的非经典功能，U1 snRNP在细胞中的丰富存在仍然是一个让人困惑的问题。为了探究lncRNA的染色质结合机制，研究者首先建立和运用一套新颖的mutREL-seq方法来高精度筛选调控RNA定位的关键序列，意外发现了U1 snRNP识别位点参与调控候选RNA的染色质滞留。相比于蛋白编码基因，lncRNA转录本含有更多的U1识别位点（同时也是潜在的5’剪接供体位点），而其基因组区域具有更少的3’剪接受体位点。并且U1 snRNP更高水平地结合在lncRNA上。随后，研究者分别使用antisense morpholino oligos（AMO）和auxin-induced degron（AID）诱导蛋白降解系统，来抑制U1 snRNA和核心蛋白组分SNRNP70的功能。研究者发现小鼠胚胎干细胞中近一半的lncRNA受U1 snRNP调控。另外，与转录调控元件关联的不稳定非编码转录本如uaRNA、eRNA等，它们的染色质结合在U1 snRNP抑制后也显著下降。研究者进一步证明了U1 snRNP直接调控成熟lncRNA与染色质的结合，而不是通过影响RNA合成、加工或降解过程的动态变化所产生的间接影响。机制上，研究者鉴定了U1 snRNP在染色质上的互作蛋白，发现U1 snRNP结合特定磷酸化状态的RNA转录聚合酶II（Pol II）。转录抑制明显降低了U1 snRNP及其所调控的非编码RNA与染色质的结合，表明U1 snRNP通过与磷酸化的Pol II互作来介导其互作RNA与染色质的结合。最后，研究者通过以lncRNA Malat1为例，进一步验证了U1 snRNP对其染色质结合的调控作用。去除SNRNP70后，绝大部分Malat1 “核斑”定位信号消失，并弥散在核质及细胞质中。同时，Malat1在活跃表达基因染色质区域的结合信号显著下降，表明U1 snRNP不仅可以将Malat1滞留在染色质上，同时也参与调控后者在染色质上的移动及其与靶基因的结合。综上，研究者提出如下模型（图1）：5’和3’剪接位点在lncRNA上的不对称分布，致使U1 snRNP持续结合在lncRNA转录本上，而不能通过RNA剪接过程释放，从而介导了lncRNA的染色质滞留。磷酸化Pol II进一步介导了lncRNA-U1 snRNP复合体在染色质上的移动（mobilization）。对于大多数低丰度、不稳定的lncRNA，它们只能靶向结合邻近的染色质区域（顺式cis作用）；而对于少数稳定和高丰度的lncRNA，如Malat1，U1 snRNP促进了其迁移和结合更多的靶基因区域（反式trans作用）。图1. U1 snRNP介导非编码RNA染色质结合的模式图。论文链接：https://www.nature.com/articles/s41586-020-2105-3

2020年3月8日，中山大学第五医院在bioRxiv上上传了一篇题为Crystal structure of SARS-CoV-2 nucleocapsid protein RNA binding domain reveal spotential unique drug targeting sites的研究，确定了SARS-CoV-2核糖蛋白N-端RNA结合域的晶体结构。虽然整体结构与其他冠状病毒核N端RNA结合域相似，但它们之间的表面静电电位特征却不同。与轻度病毒类型HCoV-OC43 等效域的进一步比较显示，β-螺旋核心旁边具有独特的潜在RNA 结合槽。结合体外数据，结果提供了SARS-CoV-2N端RNA结合域的几种原子分辨率特征，指导了针对SARS-CoV-2的新型抗病毒剂的设计。

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